1 酵素純化實驗室 |
2 蛋白質抽取 |
3 色層分析法 |
4 其它純化方法 |
5 純化策略 |
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科學文獻的 查詢 與 存取,因為電腦及軟體的應用,變得非常有效而且有趣。 |
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電腦在文獻管理上的進步速度非常快速,而且越來越方便。目前已經能夠在電腦上隨時查到即期的重要期刊文獻,而且由於 Acrobat 溜覽器的引入,馬上可以在螢幕上看到與紙本期刊完全一樣的內容,列印出來的品質也相當真實。 同時,個人資料庫 的建立,也有許多好用的軟體。例如,Reference Manager 或 EndNote 可以把你所找到的文獻,自動輸入你的個人資料庫,然後在你寫論文的時候,把所引用的文獻一一插入,並且以所要發表期刊的格式自動列出 reference list。 查資料時,網站的利用是極為重要的事;請把網站搜尋的本事練好,上網搜尋看似簡單,事實上需要一點尋寶的能力與經驗,隨便亂逛可找不到好東西。以下是一些有用的網站,有空請進入一覽,必能有所收穫。 ◆ 生化科學 http://biochemlinks.com/ ◆ 生物技術 http://www.accessexcellence.org/ ◆ 生物技術教育 http://www.ncbe.reading.ac.uk/ ◆ 化學連結 http://www.shef.ac.uk/~chem/chemdex/
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XP1100a2 |
蛋白質的 等電點 是決定其 帶電性質 的重要指標。 |
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蛋白質的帶電性質決定於其環境的酸鹼度,當環境的 pH = 6 時,則某 pI = 5 的蛋白質將會帶負電,因為環境的 pH 高於其 pI。 這幾乎是蛋白質最重要的性質,將會影響其分子構形、酵素活性,以及很多實驗上的操作,如離子交換法、電泳、等電焦集法、鹽溶等。 若環境的 pH = pI,則此蛋白質的淨電荷將為零,因為沒有來自相同電荷的斥力,此種蛋白質間將會互相凝聚起來,漸漸沈澱下來。 因此,有些蛋白質可以在其自身的等電點下沈澱,也是一種純化的方法;但須注意,也有些蛋白質在其 pI 下沈澱之後,就不容易再溶解回來,也會因此而損失;蔗糖合成脢就是如此。 |
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▲ 回原主題 ▲ TOP ■ 環境 pH 的影響 |
XP2410a1 |
蛋白質的 溶解度,受到溶液中的 酸鹼度 及 離子濃度 影響很大。 |
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當溶液中的酸鹼度逐漸接近某蛋白質的 等電點 (例如 5.2) 時,此蛋白質的溶解度會漸漸下降,這是因為蛋白質分子上的淨電荷漸漸趨向零,蛋白質分子之間的 互斥力降低 所致; 此外,這個淨電荷為零的蛋白質分子上,事實上還是有數目相同的正負電荷,這些正負電荷對互相吸引也有貢獻。可以利用這種特性,來沈澱出某已知等電點的蛋白質。 但若溶液中的 鹽濃度 漸漸提高,則蛋白質的溶解度也會提高,這是因為鹽所解析出來的大量正負離子,會阻斷上述正負電荷間的相吸,因而使得蛋白質溶入水中。當然,越遠離此蛋白質的等電點,這種溶入現象越是顯著。 上面兩圖所說明的,都是這種鹽溶的性質,只是座標表現方式不同,所顯現出來的表達方式稍有不同。 |
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XP2410a2 |
■ 硫酸銨飽和濃度表 |
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硫酸銨的百分飽和濃度,要查表得知。 |
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若你有 100 mL 某溶液要進行硫酸銨分劃,收集 30-60% 飽和度的蛋白質,則先加固體硫酸銨 16.4 gm 到達 30% 飽和;離心去掉沈澱,上清的體積一定會大於 100 mL,必須測量正確體積 (假設為 112 mL);此上清再加入 181 x 0.112 gm 硫酸銨,離心收集沈澱即得。 注意,每 L 溶液的 0 到 60% 飽和要 361 gm 硫酸銨,但若分成 0 - 30% 及 30-60% 兩段,則需要 164 + 181 gm 硫酸銨 (共 345 gm);這兩種方式有何不同? 為何加起來不一樣? 類似的問題: 若某人也要進行上面 100 mL 的分劃,但他先秤好 361 x 0.1 gm 硫酸銨,如法加入其中的 16.4 gm 硫酸銨,去除 0-30% 沈澱後,所得上清不管多少體積,把剩下的硫酸銨全部加入,再收集沈澱。這樣做法,有沒有問題? 請注意上表是在 0℃下的百分濃度表,若在其它溫度,則有不同的數字;當然,溫度越高,所需的硫酸銨越多。 |
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XP241b2 |
近朱者赤、近墨者黑,物以類聚,不論人類或是分子皆同。 |
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若要分類自然界中的所有分子,可以大略分成 極性 及 非極性 兩大類。 極性分子上的電子分佈不均勻,常常造成分子上某些部份的電子密度較大,因而產生偶極性,偶極會有暫時性的正負電荷產生;因此兩個極性分子相遇,可利用其偶極性的正負電荷互相吸引,會有較大的親和力。 反之,非極性的分子上,其電子密度分佈較為均勻,因此不會有偶極產生,事實上非極性分子上不會帶有電荷。非極性的分子,比較喜歡與非極性的分子接近,可以看作因為無法與極性分子接近,被極性分子排斥所造成的非極性間的相互吸引力量。也可以說是分子上電子的短暫分配不均,所形成的 凡得瓦爾 吸引力。 為何極性分子上的電子密度分佈會較不均勻? 若分子內的任何兩個原子之間,其間的 陰電性 相差太大,例如氫 (陰電性 2.1) 與氧 (3.5),則氫原子上的電子會被氧原子所吸引,使得氫氧附近的電子分佈不均勻。反之,碳 (2.5) 與氫 (2.1) 之間的陰電性相差較小,因此飽和碳氫化合物都是屬於極性較小的分子。 陰電性是描述一個原子搶電子的能力,陰電性大者容易搶奪其相鄰原子的電子。這是與其原子構造有關,在週期表右方的原子,因為其原子核內的質子數越來越多,正電荷較大,因此吸引電子的能力也較大。因此,分子的化學性質,幾乎都可用電子的爭奪來解釋;而分子或基團的極性大小,也可解釋大半的生物化學現象。 |
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XP3100b |
介質粒子越細,色析法的 解析力 就越佳,但流動相的流速也就越慢。 |
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介質粒子的大小,好像電視銀幕的解析度,粒子越小,解析力越好。粒子小可以降低粒子之間的空間,這些空間太大是降低解析力的原因之一 (見下圖)。 但因為粒子塞滿了所有空間,使得溶離液流過的速度變慢;流速太慢反而會導致解析力變差。 |
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XP3220d1 |
上圖誇張管柱內粒子的大小,以說明對解析力或流速的影響。 |
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粒子之間的 空間,是造成解析力不好的原因之一;將粒子變小,可降低此空間,也因此可增加解析力。 |
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XP3220d2 |
■ 如何選擇介質 |
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若解析力差不多,儘快讓你要的蛋白質早點出來。 |
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通常你都可以選擇多種膠體,但經常都是優劣互見。但若無特別考量,請選擇可讓你的蛋白質 早一點出來 的膠體介質。當你要分別純化上圖紅色或青色兩個色帶時,你的選擇如何? 實際去試試看,可能是最簡便的方法。 |
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XP3230d |
■ 膠柱的裝填方法 |
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多練習膠柱的裝填,並注意所有預先設定的條件。 |
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預先算準所需要的膠體,好好平衡在指定的緩衝液,並且把該膠體及管柱,事先保存在操作的溫度下;這樣的預備工作,幾乎已經成功一半了。 |
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XP3240b |
■ 管柱操作通則 |
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實驗之前請仔細檢討並且把握住這些條件。 |
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雖然理論不能替代實際操作,但若能在操作之前後都有以上的考慮,則將會使成功機率大增。 其中,膠體『緊密裝填』可能是最重要的考慮因素。 |
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XP3250e |
離子交換介質表面的 微環境 會比緩衝液高或低一個 pH 單位。 |
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例如上左圖的陰離子交換擔體,因為本身帶有正電,因此會吸引緩衝液中的 OH- 離子,造成擔體表面的局部高 pH。若有一樣本蛋白質的 pI 為 6,則使用 pH 為 7 的緩衝液,將使得此蛋白質帶有負電荷,可以吸附到上述陰離子交換介質。 而當此樣本蛋白質吸附到擔體時,微環境的 pH 事實上是 8 (比緩衝液多一個 pH),因此會帶更多負電,更容易吸附到介質上。因此在這種情況下,所使用的緩衝液 pH 只要比樣本蛋白質的 pI 稍高或低 1 pH 單位即可,以免吸附太強而難以溶離下來。 |
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XP3320e |
以二次元電泳展示粗抽取樣本中,所有蛋白質的分布情形。 |
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上面二次元電泳的第一次元是等電焦集法 (IEF),第二次元是 SDS-PAGE,幾乎可以把細胞中所有的蛋白質全部分離開來,上圖只顯示出 pI < 7 的蛋白質。 設若要分離一個 pI = 6 的蛋白質 (上面紅圈者),使用 pH 7 的緩衝液,則幾乎上圖所有的蛋白質都可以吸附上去,然後再以鹽梯度一一溶離出來。上面長方形洋紅色框中的蛋白質,都會一起溶離出來,要再以其他的方法分離之。 |
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XP3320b |
■ 質子的吸附或脫離 |
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質子的吸附或脫離,是造成生物分子帶有正或負電荷的主因。 |
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質子 proton 是宇宙中的奇妙粒子,這是一顆光溜溜的粒子;當氫原子丟掉一個電子後,即可得到質子,因此寫作 H+。 質子可以隨時附著到一個帶有電子密度的基團 (如胺基),使該基團多帶 了一個正電。質子也很容易由某一個基團脫出 (如羧基),而使該基團成為帶負電。在水環境中,質子數量的多寡就是酸鹼度的指標,會影響分子上各種基團的帶電性質。而巨分子上這些電荷性質的變化,就是生物化學裡許多反應機制的根本肇因。 |
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XP3310c |
溶離體積越大,分離效果較好,但樣本濃度變稀。 |
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同樣 0 - 0.5 M 的 NaCl 梯度,可以因為體積不同,而拉出不太一樣的結果。上圖的總體積只有 100 mL,看起來較為陡峭,但兩個溶離峰似乎沒有分得很好;下圖體積共有 300 mL,可以分得很開,但是但樣本變得很稀 (因為要分佈在 300 mL 範圍中)。因此,似乎中央的溶離方式比較折衷,兩峰之間分開了,而且不會太稀。 |
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XP3340c |
離子交換法多以鹽梯度進行溶離,有兩種梯度做法。 |
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連續梯度需要梯度製造器 (左圖),分別裝有高限及低限溶液,則可拉出由低到高的連續梯度。階段梯度則依序換各種濃度的緩衝液,成為樓梯般的段落,不須梯度製造器。不管用哪一種,管柱內膠面上方不可以有液體存在 (右圖);這個多餘的體積,稱為 無效空間 (dead volume),會破壞做好的梯度。 |
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XP3340b |
離子交換操作的關鍵在於 膠體是否平衡好。 |
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離子交換法是所有層析法中,最多樣、有效、方便的分離方法,但其機制也較為複雜且容易出錯,請把握以上各操作要點。 |
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XP3340a |
■ 色層焦集法圖解 |
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硬是把你擠到你應該停留的地方。 |
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大部分男生都上過成功嶺,有些女生好像也有去過;不過,以後聽說就沒有了。 可惜之至,否則你可能在排隊的時候,突然體會到色層焦集法的原理。 有一年某生甲第三天才去報到,全連都已經整理好隊伍了,依照高矮整齊排成一列。 班長命令甲生插到隊伍中去排隊,條件是 左邊的人比他高,右邊的人比他矮。 甲生馬上依此條件進入隊伍,不管甲生從隊伍何處插入,只要遇到身高比他高的,他就往右移動;遇到比他矮的,就往左移,則一定能夠找到一個位置,符合班長的條件。很快地,甲生就在一個位置安定下來。 而班長的資料顯示,甲生左邊的人是 169 公分,而甲生右邊的人是 167 公分,班長問也不問甲生,馬上填入甲生身高資料為 168 公分;而甲生的身高是 168.3 公分,在誤差範圍之內。 色層焦集法 與 等電焦集法 都是依如此原理運作的,兩者都可以在 膠柱 或 膠片 上預先形成一個 pH 連續梯度;而樣本分子就像甲生,在此 pH 梯度中,找到與自己 pI 相當的位置;在此位置因為 pH = pI 之故,樣本不帶有電荷而無法移動,會被焦集成一色帶,並停留在自己 pI 的位置。 |
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▲ 回原主題 ▲ TOP ■ 等電焦集法 |
XP3350a |
細胞內的反應基團都不是很強。 |
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有機化學裡的強烈反應基團,通常都不會出現在一般的生物分子上。像 KCN 的強反應性物質,對大部分細胞而言根本就是劇毒。最常見的都是一些中等程度的基團,如胺基或酸基等,者兩種基團也是組成胺基酸的重要反應基團,對蛋白質的性質影響極大。 雖然如此,這些中低反應性的基團,還是可以被利用來作為連接用的基團,例如胺基與酸基就可以連成胜汰鍵,是蛋白質的生合成方式。我們也可以利用這些基團,把配體耦合到擔體上去。 |
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XP3410b3 |
有兩大類力量,構成分子之間的專一性吸引力。 |
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一是兩個分子之間,其構形有如積木般的互補,會因為凡得瓦爾力的關係,產生專一性吸引力 (見下圖)。另一則為兩分子之間,因為某些基團間產生了二級鍵,所造成的吸引力。通常兩個分子間的專一性吸引力的形成,這兩大類力量都會有貢獻。 親和性結合力量的大小,可以用解離常數來表示,一般解離常數至少在 10-6 以上才算有足夠的親和力 (也就是說一百萬對結合分子中,只有一對會解離開來)。 |
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XP3410a1 |
■ 構形互補的吸引力 |
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凡得瓦爾力 是造成兩個互補平面之間產生專一性吸引力的主因。 |
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凡得瓦爾力 是分子間微弱且短暫的吸引力,多發生在非極性的分子之間;雖然極性分子之間也會有凡得瓦爾吸引力,但其重要性則不若其它二級鍵。 繞在原子最外圍的電子依一定的軌道運轉,而此電子在軌道球面上的分佈通常是均勻的。當兩個原子漸漸接近時,這兩個原子上的電子會相互影響其分佈情形;若其中一個原子的電子分佈非常短暫地發生不均勻現象,則會導致短暫的偶極性產生 (d+.d-),而這短暫的偶極性馬上誘導另一個原子上的電子,也產生電子分佈不均的現象,但偶極剛好相反 (d-.d+)。 這兩個相反的偶極,便可以產生極微弱且短暫的吸引力,即稱為凡得瓦爾力。 凡得瓦爾力的存在太短暫,因此很容易就散掉;為了達致最大的凡得瓦爾力,兩個原子核之間,要保持在一最適距離;太近則因電子相斥而減弱,太遠則電子間的吸引力又不夠。這個最適距離,即為該原子的凡得瓦爾半徑。 又因為凡得瓦爾力實在很弱,因此要集合數十個凡得瓦爾力才能發揮作用。兩個巨分子間的接面,若其上的對應原子們,每一對都能保持在凡得瓦爾半徑上,則此二巨分子便可產生相當強的親和力量;這只有當兩個巨分子間的接觸面,剛好成為積木般的互補形狀時,才能達成。這種巨分子間的親和力,造就了非常多的細胞生理特性與功能,極為重要。 |
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XP3410a2 |
先洗去無法吸附的雜質,再溶離下結合在固相擔體上的物質。 |
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先把 胰蛋白脢 的 抑制劑 CHOM 結合到 固相擔體 上,當含有胰蛋白脢的樣本 (A) 通過此擔體時,胰蛋白脢會被 CHOM 抓住,而把雜質洗掉 (B);雜質洗乾淨之後,再以很低的 pH (2.05) 破壞其吸引力,而把胰蛋白脢溶離下來 (C & D)。因為胰蛋白脢在低 pH 下很安定,因此其活性都可以保持住,非常適用此種溶離方式。 純化結果可以用電泳來檢定,比較 A 與 B 可以發現,在 B 中有些色帶不見了 (灰色箭頭),而這些色帶卻在 C 中出現 (深藍色箭頭),但也多出一個色帶 (淺藍色箭頭)。若把 C 的樣本,同時以 SDS-PAGE 檢定,可以發現只出現一個色帶 (洋紅色箭頭)。請解釋以上這些結果。 |
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XP3420d2 |
■ 製備式電泳膠片 |
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最簡單的製備式電泳裝置,可以借用一般的電泳槽。 |
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製備式電泳操作通常都不會有很大問題,但要注意酵素活性的保持,以及回收率可能會偏低。有些不穩定酵素,根本不適合進行製備式電泳,要先以少量樣本試試看。 市面上所推出的製備式電泳裝置很多,尤其是 Bio-Rad 公司,一直在這方面有新產品的研發。 |
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XP4100b1 |
■ 製備式電泳操作 |
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製備式電泳直接把所要的蛋白質色帶切下來溶離。 |
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有幾個方法可以檢定蛋白質的位置: (1) Coomassie Blue 染色法; (2) 活性染色; (3) UV 照射呈像。定位後要把含有目標酵素的膠體切出來,進行電泳溶離,以收穫酵素。 |
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XP4100b2 |
在很高的重力下,分子依照其密度的差異,會有不同的沈降速率。 |
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超高速離心是一種較為不同的分離方式,與層析法、電泳法等所根據的分子性質,都不很一樣;大概只有超高速離心法,是依據分子的 密度 來分離的。 實際上,它有一個特別制定的單位叫 Svedberg unit (S),用來描述分子的沈降性質;S 除了與分子密度有關外,也與分子量、分子形狀、組成等有關。 因此,分子量大的,不一定沈到最底部,例如 RNA 的分子量一般都小於 DNA,但是因為捲繞情況比 DNA 緊密,因此其沉降係數比 DNA 高很多。 另外,同一質體的三種構形 (supercoil, linear, open curcular) 雖然都有相同的分子量,但沈降速率有很大差別。 |
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XP4200a |
像玩具總動員一樣來玩純化的遊戲。 |
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要純化或分離出某種蛋白質,就要利用蛋白質之間某些 性質上的差異,例如它們的形狀、大小、比重等不同。 如上圖的假想例中有 12 個物件,其大小、形狀與比重都不完全相同。若我們要分離出其中的 5 號木球,首先用一大一小兩種篩子,就可去掉 1, 2, 3 號三個較大者,以及 9, 10, 11, 12 號四個較小者。剩下的 4 - 8 號都有相同的大小,但因比重不同,在一個裝有密度梯度溶液 (如甘油梯度) 的量筒中,7 號石頭塊很塊下沈,六號棉球又無法下沈,我們因此可以在中央部份收到木質的 4, 5, 8 號物件。然後把這最後的三個物件放在一斜坡上滾下來,5 號木球會因為形狀的關係滾得最快,而 4 號因為是方塊而幾乎不動,8 號則介於兩者之間慢慢滾下來。我們因此可以分離得到 5 號木球,同時也可分得 4 號及 8 號。 在實際生活裡,我們當然不會用如此笨拙的方法來分離這些東西,但其基本原理與蛋白質的分離與純化非常類似;我們的確利用蛋白質間分子量、分子形狀及密度的不同,或者分子所帶電荷不同,來作酵素的純化分離工作。 |
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XP5120b |
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本網頁最近修訂日期: 2002/07/26
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